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未受保护的N-乙二醇恶唑啉的合成和半合成方法

未受保护的N-乙二醇恶唑啉的合成和半合成方法


Ñ聚糖恶唑啉已经找到广泛用作激活供体基底为内切β- Ñ -acetylglucosaminidase(ENGase)的酶,即在它们的生产也相应激趣的一个重要应用,无论是通过全合成,并通过使用从分离的寡糖半合成自然资源。在报道的许多合成方法中,大多数依赖于关键Manβ(1-4)GlcNAc二糖的制备(通过全合成或来自刺槐豆胶的半合成),然后可以在3-和使用标准糖基化化学的甘露糖单元的6位。早期的方法随后依赖于路易斯酸催化的全乙酰化N的转化以这种方式产生的聚乙二醇寡糖进入它们相应的恶唑啉,然后进行全面脱保护。然而,该领域的一个关键突破是Shoda开发了2-氯-1,3-二甲基咪唑啉氯化物(DMC)和相关试剂,它们可以直接在还原末端直接转化低聚糖和2-乙酰氨基糖在水中加入相应的恶唑啉。因此,现在可以在水中实现恶唑啉形成作为任何合成顺序的最后步骤,从而不需要任何进一步的保护基团操作,并简化合成策略。作为全合成的替代方案,显着数量的几种结构复杂的N. - 甘蔗可以从天然来源中分离,例如蛋黄和大豆粉。这些材料的酶促转化与DMC介导的恶唑啉形成作为最终步骤一致,允许以比通过全合成可实现的更大量和更有利的方式获得选择的N-甘氨酸恶唑啉结构。

关键词: DMC,ENGase; 糖基恶唑啉; N-聚糖; 低聚糖


糖基恶唑啉是一些[1-5](但不是全部)[6]的水解途径中的高能中间体,其中许多糖苷酶水解2-乙酰氨基糖与其他物种之间的键。特别是内切-β N-乙酰氨基葡萄糖苷酶[7](ENGases,EC 3.2.1.96),一种特异性切割在连接到N-连接糖蛋白N-聚糖的最内部两个GlcNAc残基之间的酶,都通过两步机制涉及2-乙酰胺基团的邻近基团参与和作为高能中间体的恶唑啉[8]

糖基恶唑啉首先引起了合成化学家的注意,因为它们被用作糖基供体,用于合成包含2-氨基-2-脱氧糖的寡糖[9]虽然集中在生产和反应的大多数合成工作的葡糖 -构型恶唑啉(即,那些从衍生的GlcNAc),相应的甘露[10,11]半乳糖 -构型[12]也已经提出和研究的化合物。尽管第一代这些恶唑啉供体[13,14]被证明相当不具有活性,并且发现仅有限的应用[15-18],但在甲基中加入三个氯确实增加了它们的效力。[19-23]然而,与更常规的葡糖胺衍生的供体相比,应用仍然不太普遍。

对糖基恶唑啉,特别是N-聚糖的恶唑啉衍生物的生产的重新兴趣是它们作为糖苷酶催化合成的活化供体物种的效用的直接结果[24-27]最初的活动集中在使用恶唑啉作为几丁质酶催化糖基化的供体[28-31]然而,在2001年的一篇开创性出版物中,Shoda [32]及其同事报道,二糖恶唑啉(方案1)是两种ENGase酶(Endo A和Endo M)的有效供体底物,两者都发生了转折。它能够用它来糖化两个GlcNAc受体,产生三糖产物。


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方案1: 使用N-乙二醇恶唑啉作为供体,GlcNAc受体的第一次ENGase催化的糖基化

随后,ENGases与N-乙二醇恶唑啉组合,已经成为各种生物学上有意义的糖肽的聚合生产和包括mAb在内的糖蛋白重塑的生物催化剂[33,34]因此,作为这些酶的供体底物N-乙二醇恶唑啉的有效生产因此在过去15年中成为重要的领域[35,36]

N-乙二醇恶唑啉的合成

形成糖基恶唑啉

单糖的糖基恶唑啉可以使用强路易斯酸(例如,FeCl 3,SnCl 4或TMSOTf)和完全保护的(通常是全乙酰化的)GlcNAc或其他2-乙酰氨基糖[37-40]直接产生通过在异头中心活化离去基团和2-乙酰胺参与邻近基团来实现恶唑啉的形成。不幸的是,将这些反应条件应用于寡糖底物导致糖苷间键的显着裂解,以及相应的低产率产物。然而,有两种可用于生产低聚糖恶唑啉的方法是用二氯乙烷中的TMSOTf [39]或TMSBr,BF 处理过乙酰化糖。3 ·Et 2 O和2,4,6-可力丁在二氯乙烷中[40]方案2)。两种方法均得到中间至良好收率N-聚糖的恶唑啉,而没有寡糖链的裂解; 据报道,后一种方法可以提供更多结构复杂的N-甘蔗恶唑类化合物。

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方案2:使用路易斯酸从过乙酰化糖 制备N-乙二醇恶唑啉。


然而,使用受保护的糖作为底物存在一些限制,因为必须在后续步骤中除去任何剩余的保护基团。首先,最重要的是,糖基恶唑胺对酸性水解极不稳定,因此该方法排除了使用任何需要酸性条件的OH-保护基团进行裂解。其次,一些糖基恶唑啉也易于通过催化氢化进行还原裂解[41]。,对可以使用哪些OH-保护基团提出了显着的进一步限制。因此,文献中的大多数报道使用了保护基团方案,其中所有的糖羟基都被碱不稳定基团保护,最常见的是乙酸酯。重要的是,糖基恶唑啉对用于除去酯的典型碱性条件(例如,Zemplen脱乙酰化)完全稳定。因此,普遍接受的方法(直到2009年)是对完成的寡糖进行所有保护基团操作/相互转化,以确保在恶唑啉形成之前所有OH基团都被保护为碱不稳定的酯。

2009年,庄田发表[42]一文,这是彻底改变其糖恶唑啉作了方式,并且这将最终使许多更容易获得。在这项开创性的工作中,Shoda报道了在三乙胺作为碱的情况下用活化剂2-氯-1,3-二甲基咪唑啉氯化物(DMC)在水溶液中处理GlcNAc,导致形成糖基恶唑啉。良好的收率(方案3)。此外,这种显着的转化同样适用于相当大的寡糖结构(参见下文)。这一突破改变了从那个时间点开始制造所有未受保护的N-葡聚糖恶唑啉的方式

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方案3: 通过用DMC和Et 3 N在水中处理,将未保护的GlcNAc直接转化为糖基恶唑啉

虽然在后来的论文中,Shoda已经发表了可用于实现相同转化的替代试剂,如2-氯-1,3-二甲基-1H-苯并咪唑-3-氯化物(CDMBI)[43],但DMC仍然是最常用的糖基恶唑啉生产试剂。DMC对寡糖中的其他官能团具有显着的耐受性,例如唾液酸[44]和磷酸盐[45,46]完全不受影响; 前者可能相当令人惊讶,因为DMC最初由Ishikawa开发为肽合成的羧酸活化剂[47]。该程序的一个警告是,它对GalNAc的效率要低得多; 在这种情况下,相应的恶唑啉仅以约50%的产率产生。实际上,当还原末端的糖具有半乳糖构型时,最近开发的一些其他非常有用的DMC介导的水溶液中未保护的还原糖的转化也不太有效[48-50]

通过全合成生产未保护的N-葡聚糖恶唑啉

大多数报道的N-乙二醇恶唑啉的合成使用了关键的选择性保护的Manβ(1-4)GlcNAc二糖构建块,然后其在分支甘露糖单元的3-和6-位延伸。在合成这种关键二糖[51,52]的可能方法中,两种主要用于合成N-甘蔗恶唑啉。OH-2差向异构化方法,使用葡萄糖 -已经配置的供体用于选择性保护的葡糖胺受体的OH-4的糖基化比其他方法更多地使用。通过酯基对供体的OH-2的选择性和正交保护促进了所需β-连接的立体选择性形成,并且在糖基化以进行差向异构化后也获得了OH-2。使用这种方法的许多N-葡聚糖恶唑的合成[53-58],使用Lev保护对供体的影响,首先由Boons [59]开发,然后通过超声辅助由醋酸盐进行三氟甲磺酸和亲核取代,首先由Fürstner [60,61] 似乎是最佳的。使用这些关键步骤的示例用于合成截断的复杂双触角N-乙二醇恶唑啉[62],如方案4中所示葡糖甘露差向异构化过程中,甘露糖单元的OH-3的选择性脱保护,随后通过糖基化和3分支臂的延伸。随后4,6-亚苄基保护基团的去除(或区域选择性还原开环)允许在第6位进行第二次糖基化。将所有OH-保护基团转化为乙酸酯,将邻苯二甲酰胺转化为乙酰胺,然后使用TMSBr,BF形成恶唑啉。3 ·Et 2O和2,4,6-可力丁在二氯乙烷中,最后脱乙酰化。该基本策略的修改允许合成多种截短的和结构修饰的聚糖[53-59]


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方案4:通过差向异构化方法和路易斯酸介导的恶唑啉形成来 完全合成截短的复合双触角N-甘氨酸恶唑啉。

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